|
|
 |
|
|
|
|
 |
Erprobung und Vorbereitung einer praktischen Nutzung ökotoxikologischer Testsysteme (ERNTE) |
|
| ERNTE-Home | News | Präsentationen | Publikationen | Poster |
|
| |
|
| |
 |
|
| |
Beurteilung standardisierter Testsysteme hinsichtlich des Einflusses der Eigenschaften natürlicher Böden und Bodenmaterialien auf das jeweilige Testergebnis als Voraussetzung für die Testanwendung.
- Auswahl einer überschaubaren Zahl von für Deutschland repräsentativen Freilandböden
- Identifikation der wichtigsten biologischen Testsysteme für Böden
- Erarbeitung der ökologischen Bandbreite des jeweiligen Testsystems für die wichtigsten Bodenfaktoren
- Standardisierung des Köderstreifentests als einfache Screeningmethode.
|
 |
| |
 |
|
| |
Auswahlkriterien und Vorschläge erfolgen auf der Grundlage des BBSK-Konzepts und des RefeSol-Ansatzes.
Problem : Auswahl von Kontrollböden
Grundlage : ISO - Richtlinie 15799 :
Several types of control material can be used: - an uncontaminated soil with comparable pedological properties
to the sample being tested
- an inert material (e.g. quartz sand)
- a certified natural soil (e.g. LUFA soil)
- a standardized artificial soil (OECD 1984; ISO 1998)
|
|
|
 |
|
|
(ohne mikrobiologische Verfahren =>TV2)
Auswahlkriterien:
- Ökologische Relevanz (key species, ecological engineer)
- Häufige Verbreitung in Bezug auf Böden
- Lebensschwerpunkt im Boden
- Enger Kontakt mit dem Boden oder einzelnen Phasen
- Mittlere Empfindlichkeit gegenüber (chemischen) Belastungen
- Einfache Zucht bzw. Handhabbarkeit
- Validiert oder standardisiert
Vorschläge für biologische Testsysteme in Böden
Grundlagen :
DBU(2000), SETAC(2000), BUA(2001), Dechema(2001), ISO(2001)
| 1.
|
ein kombinierter Regenwurm-Akut/Reprotest
(ISO 1993; ISO 1998) |
| 2.
|
ein Collembolen-Akut- bzw. Reproduktionstest
(ISO 1999) |
| 3.
|
ein chronischer Pflanzentest
(ISO 1994; ISO 2002) |
| |
|
| Mögliche Ergänzungen: |
| 4.
|
ein Enchytraeen-Akut- bzw. Reproduktionstest
(ISO 2002)
|
| 5. |
ein Regenwurm-Vermeidungstest
(ISO 2002) |
|
|
|
 |
|
|
| Regenwurmakuttest |
| Testgefässe |
Testorganismen |
 |
 |
Testgefässe mit OECD-Kunsterde (grau) und Freilandboden
|
Eisenia fetida andrei (Familie Lumbricidae; Ordnung Clitellata; Klasse Annelida) |
zum Anfang
| Regenwurm- |
| Vermeidungstest |
Reproduktionstest |
 |
 |
Regenwürmer in der Mitte
zwischen Kontroll- und kontaminiertem Boden |
Zählung von Jungtieren am Ende
des Reproduktionstests |
| Collembolen-Reproduktionstest: |
| Durchführung |
 |
 |
| Folsomia candida (Will.); Familie Isotomidae, Ordnung Collembola (Springschwänze), Klasse Insecta |
Zuchtgefäss |
| Collembolen-Reproduktionstest: |
| Auszählung |
 |
 |
| Kontrolle |
Betanal (a.i. Phenmedipharm): 10 mg/kg
|
| Pflanzentest: |
| Durchführung |
 |
 |
| Testgefäß mit Stoppelrüben; Brassica rapa (Familie Brassi-caceae, Ordnung Passiflorales) |
Testgefässe mit unterschiedlicher Entwicklung der Pflanzen nach 35 Tagen |
| Pflanzentest: |
| Testspezies |
Messparameter |
 |
  |
| Alternative Testspezies: Hafer; Avena sativa (Ordnung Poales) |
Biomasse (Tag 14 und 35)
Sprosslänge, Schoten (Tag 35) |
zum Anfang
|
|
|
 |
|
|
Das Vorkommen und die Verbreitung von Bodenorganismen wird nach jetzigem Kenntnisstand primär durch die folgenden Bodeneigenschaften determiniert (je nach Gruppe in unterschiedlicher Reihenfolge):
- ph-Wert
- organischer Gehalt
- Bodenart
- (Feuchte)
Auf der Grundlage der Testung unbelasteter Böden wird die jeweilige Anwendungsbreite jedes Testsystems bestimmt.
|
|
|
 |
|
|
Prinzip:
Verlust künstlichen oder natürlichen Ködermaterials, das in kleinen Plastikstreifen gegenüber Bodenorganismen exponiert (keine Differenzierung nach Organismen möglich); Dauer: einige Tage bis Wochen
|
 |
Testmethode:
Bait-lamina test (von Törne 1990,
Kratz 1998)
|
|
|
|
 |
|
|
 |
 |
Frassbild nach Exposition in einem biologisch aktiven und einem
nicht-aktiven Boden
|
Zwei Köderstäbe
in einem Gefäss des Regenwurmreproduktionstests |
zum Anfang
|
|
|
 |
|
|
|
|
 |
 |
Projektträger:
|
 |
 |